- Úvod
- Návody, rady, tipy
- Petri misky, agary a rozdělení
- Příprava agarů a rozdělní
Příprava agarových médií a jejich rozdělení
1️⃣ Rozdělení agarových médií
Agarová média se používají pro izolaci a kultivaci hub. Dá se je rozdělit podle hlavního cukerného zdroje:
| Typ média | Hlavní složky | Použití |
|---|---|---|
| PDA (Potato Dextrose Agar) | Bramborový odvar + dextroza + agar | Standard pro většinu saprofytických hub, rychlý růst mycelia, vhodný první klon z tkáně nebo pro restart |
| MEA (Malt Extract Agar) | Maltový extrakt + agar | Silný růst a bohatá výživa, vhodné pro houby náročnější na stopové látky |
| CCA (Cornmeal Agar / brambor + kukuřičný sirup) | Bramborový odvar + kukuřičný sirup + agar | Kombinace dostupnosti a čirosti média, vhodné pro práci doma |
| DA (Dextrose Agar) | Dextroza + agar | Čiré médium, snadná kontrola kontaminace, méně komplexní výživa |
2️⃣ Základní principy přípravy
Sterilizace – vše musí být sterilní. Používáme autokláv nebo tlakový hrnec (121 °C, 15–20 min).
pH – většina hub preferuje 5.5–6.5.
Aseptická práce – laminární box je nutný pro plnění Petri misek a inokulaci.
Agarová konzistence – standardně 15–20 g/l (1,5–2 %) agar; pokud je příliš řídký, mycelium roste pomaleji, příliš tuhý agar zpomalí kolonii.
3️⃣ Jednoduché recepty
A. PDA – klasika
200 g brambor (oloupané, na kostky)
1 l demineral. vody → vařit 30 min, scedit
20 g dextrozy
15–20 g agaru
Postup:
Připrav odvar z brambor a scedit.
Přidej dextrozu a agar, rozmíchej.
Sterilizuj v autoklávu 15–20 min.
Po vychladnutí (~50 °C) nalij do Petriho misek v laminárním boxu.
B. MEA – maltový extrakt
30 g maltového extraktu
15–20 g agaru
1 l demineral. vody
Postup: stejný jako u PDA. Vhodné pro houby náročné na živiny.
C. Brambor + kukuřičný sirup (CCA)
75 g brambor
1 l demineral. vody (odvar)
10–15 g kukuřičného sirupu
15 g agaru
Výhody: médium je čiré, rychle roste, vhodné pro domácí práci.
D. Dextrose agar (čiré)
20 g dextrozy
15–20 g agaru
1 l demineral. vody
Výhody: nejvíce průhledné, skvělé pro vizuální kontrolu kontaminace, méně výživné, vhodné pro rychlé testy.
4️⃣ Pracovní postup
Sterilní plnění Petriho misek
Pracuješ v laminárním boxu.
Petriho misky nejlépe jednorázové sterilní, nástroje (lžíce, pinzety, skalpely) sterilizuj/čisti alkoholem, ideálně však plamenem. Alkohol je jen dezinfekte, ne sterilizace!
Nalij agar teplý (~50 °C) do misek, zakryj víkem, nech ztuhnout. Nejlépe v proudu vzduchu laminárního boxu. Před vyjmutím z boxu zajistit parafilmovou páskou! Na ruce dezinfekci!
Uchovávej v lednici a temnu do inokulace.
Inokulace mycelia
Použij sterilní nástroje (např. skalpel nebo inokulační jehlu i jednorázová injekční jehla může být).
Přenášej malý kousek mycelia z čisté zdravé kultury.
Přikryj misku a označ, datum a druh.
Inkubuj při vhodné teplotě (většinou 20–25 °C).
Tipy
- Vyhnout se tzv. přetížení Petriho misek – lepší menší množství mycelia, aby nedošlo ke kontaminaci.
- Pokud médium ztmavne nebo je cítit zápach, pravděpodobně za to může kontaminace – misku vyhodit.
- Lepší menší série médií a častěji, než velké množství naráz – snazší kontrola.


